首先，預實驗必須要當做正式實驗來對待（態度要放端正，這是必須的）。預實驗的每一步都需要詳細規劃，多方籌謀。不論是實驗動物的選擇，還是檢測試劑的購買，都盡量和正式實驗統一標準。建議大家先把所有試劑和購買完畢后，再去購買實驗動物。因為動物會長胖，長胖后給劑量就要增加，不僅多花錢，并且還容易影響實驗效果。筆者曾經提前將實驗動物買回，但因為特殊原因沒能購買到造模，終只能忍痛割愛將動物贈送他人，白白虧了一筆血汗錢（那批老鼠在我這兒白吃白喝長得太胖，沒辦法用作造模）。動物及試劑購買首先需要考慮：實驗動物品種、體重、性別、周齡（通常根據既往文獻報道可以獲得答案）、數量（需要考慮到實驗有一定動物死亡率或者動物本身會打架互毆，因此需要提前購買足夠的動物）。動物購買的途徑、安置的地點，飲食管理（一般實驗室會有動物房，也可以從其他地方購買），動物免證明、倫理證明需要提前準備好。實驗相關的試劑和：比如造模和，動物干預所需，陽性選擇及購買（有些購買很困難，必須通過特殊程序才能買到）。如果涉及到有創操作，要提前準備好（建議提前購買），手術。需要了解自身實驗平臺能完成哪些技術。通過不同分組之間的細胞對于劃痕區修復能力的不同，可以判斷各組細胞的遷移與修復能力的差別。寧夏實驗科研技術服務服務

靜置25分鐘后把酒精倒干，用吸水紙吸出多余的酒精，然后配壓縮膠，同樣的操作，關鍵是梳子要插得快，要小心梳子下產生氣泡，然后靜置30分鐘。如果是當天跑膠，我會等上層膠凝2個小時再用，但要注意防干燥縮水，可以在一個小時的時候沿著梳子上緣加點電泳液。所以我一般提前一晚制膠，泡于純水或者電泳液里置于4度冰箱暫存。三、蛋白電泳1、上樣前準備把膠組裝到電泳芯上，注意密閉性(否則漏液)，如果內槽漏液就不是勻強電場了，條帶可能就不是一條直線。然后內槽倒滿電泳液，拔梳子，這一步要小心，梳子要兩邊一起緩緩往上拔出，然后觀察泳道內有無脫落的膠粒或者膠絲，有的話用1毫升注射器吸出。然后從冰箱取出蛋白樣品，解凍。準備振蕩器。2、上樣和電泳注意，上樣后蛋白會開始慢慢在膠中彌散，所以上樣越快越好。我習慣先上蛋白Marker,再上蛋白樣品，蛋白上樣前確保樣品完全解凍和充分振蕩(推薦使用振蕩器振蕩)，吸的時候沒有拉絲即可，建議上樣分鐘把樣品從冰上取出來，不然樣品中SDS可能會結晶析出，從而影響電泳效果。上層膠80V25分鐘，下層膠120V65分鐘。四、轉膜1、轉膜前準備我會在電泳結束0分鐘準備，把轉膜液配好置于4度冰箱預冷，然后裁膜，準備轉膜裝置。上海疾病模型科研技術服務服務protocol 分享｜過表達細胞株的構建。

m6A修飾圖譜構建及作用機制：通過m6A甲基化測序（MeRIP-Seq,miCLIP）構建疾病細胞模型或者發病組織的m6A修飾譜，分析m6A的motif,peaks數量及分布，Peak關聯基因的特征，聯合RNA-seq研究m6A甲基化與表達的關系。m6A研究思路方案一方案二研究案例1、.(IF=)為研究ALKBH5的m6A作用機制，作者利用芯片和m6A-seq篩選到膠質瘤增殖相關的FOXM1，通過qPCR、WB、免疫熒光、核質分離WB/qPCR、RIP和MeRIP等實驗證明ALKBH5通過去甲基化調節FOXM1在GSCs中的表達。為研究ALKBH5對FOXM1的作用是否受其他因子的調節，作者研究了FOXM1的鄰近基因，發現lncRNAFOXM1-AS與FOXM1序列互補，且共表達、共定位，進一步通過RIP,RNApulldown等實驗證明lncRNAFOXM1-AS促進ALKBH5和FOXM1初級轉錄本的相互作用。通過細胞實驗進一步驗證ALKBH5在lncRNAFOXM1-AS的作用下維持FOXM1的表達和細胞增殖，從而維持GSCs的干性。圖3ALKBH5敲除細胞中m6A修飾的特征和基因表達的變化2、RNAN6-methyladenosinemethyltransferaseMETTL3promoteslivercancerprogressionHepatology,2017.(IF=)表觀遺傳改變極大地促進了人類癥的發生。傳統的表觀遺傳研究主要集中在DNA甲基化，組蛋白修飾和染色質重構。近。

外泌體的抑制作用外泌體水平升高通常與不同類型的惡化相關，一些研究人員希望能通過降低外泌體到正常水平來防止不良預后。從這個角度出發，許多正在進行的研究旨在通過調節外泌體生成分泌的過程或通過特異性靶向其成分抑制其與靶細胞的相互作用來調節外泌體的產生。如今我們對外泌體機制和不同生理和病理條件下的功能的理解呈指數級增長，雖然目前其生物學功能還未完全解析清楚，但研究者們在許多領域均已對其進行了深入探索。外泌體不是廢物顆粒，而是細胞間通訊的關鍵介質，作為宿主細胞的衛星，外泌體包含大量的生物信息，其功能超出了初的預期，宿主細胞控制著外泌體的內容物，從而改變了自己或其他細胞的命運。其次，外泌體對的進展和轉移有著強烈的影響，可以通過外泌體預測轉移的部位并建立轉移前的生態位。參考文獻：[1]高方園,焦豐龍,張養軍,秦偉捷,錢小紅.外泌體分離技術及其臨床應用研究進展[J].色譜,2019,37。細胞污染的處理的技術。

必須仔細考慮所有可能影響實驗的條件和技術參數以獲得可重復且一致的實驗結果。因此，要求實驗人員深入了解和熟練掌握操作過程才能準確地構建CLP模型。造模評價該模型通過模型動物自身引發膿毒癥，與臨床膿毒癥類似的地方在于有連續分散的細菌源，血中內檢出率及細菌培養陽性率高，動物體溫降低以及血流動力學早期高排低阻晚期低排低阻的特征也與臨床相仿，在建模的同時模擬臨床膿毒癥方法，輔以充分的液體復蘇和適當輔助(如藥物)，另外這個模型可控性高，標準化水平高。該模型中膿毒癥的嚴重程度受3個重要因素的影響：結扎盲腸的長度、穿孔針的大小和CLP后的支持。結扎盲腸的長度是死亡率的主要決定因素，隨著結扎盲腸的長度的增加，促炎細胞因子的水平也在增加。來源：[1]李晗,田李均,韓旭東.膿毒癥體內外模型研究進展.中國與化療雜志,2020,20(01):.[2]彭鳳輝,鄧曉彬,呂立文.膿毒癥動物模型的研究進展.廣西醫科大學學報,2020,37。細胞生物學是生物學的一個分支，研究細胞的結構、功能、生理和遺傳學等方面。貴州血液科研技術服務實驗室

干貨分享 | TUNEL法檢測細胞凋亡原理和經驗.寧夏實驗科研技術服務服務

采用opti-MEM和Lipo3000分別轉染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG質粒及對照載體，每皿加入脂質體-質粒轉染混懸液按購買脂質體相關說明書操作定量。繼續培養24h。2)24小時后，將培養基更換為新鮮的DMEM完全培養基，放進細胞培養箱繼續培養48~72h。3)48~72h后收集上層培養液，并過μm濾膜，采用ELISA法對所獲得的慢載體進行滴度測定。如不及時使用可以凍存于-80℃。3、慢轉染1)轉染前1天將細胞接種6孔培養板，時細胞的融合率約為50%，前需換液，加入1mLDMEM完全培養基。2)冰浴融化后加入相應體積的液及聚凝胺（Polybrene），混勻后放入37℃孵箱中繼續培養3)4h后補充1mL培養基，14h后換液（24h內換液即可）。4)72h后用倒置顯微鏡觀察熒光，監測效率，出現較多熒光時將等量的轉染細胞和未轉染細胞分別加入等濃度Puromycin（Puromycin或其他篩選濃度需要事先摸索）。5)待未轉染細胞全部死亡并且可觀察到滿意熒光量時，降低Puromycin濃度培養。也可以挑去單克隆細胞株進行進一步培養，以得到滿意的穩定表達目的基因的細胞株。6)使用qRT-PCR和Westernblot的方法檢測目的基因的表達量和蛋白水平是否顯著提高。7)由此可得三組細胞株：a.正常細胞株；b.空載載體的細胞株。寧夏實驗科研技術服務服務