細胞凋亡與細胞壞死不同，細胞凋亡不是一件被動的過程，而是主動過程，它涉及一系列基因的ji活、表達以及調控等的作用，它并不是bing理條件下，自體損傷的一種現象，而是為更好地適應生存環境而主動爭取的一種死亡過程。上海東寰為您分享細胞凋亡與細胞壞死的區別。細胞凋亡與程序性死亡其實從嚴格的詞學意義上來說，細胞程序性死亡（PCD）與細胞凋亡是有很大區別的。細胞程序性死亡的概念是1956年提出的，PCD是個功能性概念，描述在一個多細胞生物體中某些細胞死亡是個體發育中的一個預定的，并受到嚴格程序把控的正常組成部分。例如蝌蚪變成青蛙，其bian態過程中尾部的消失伴隨大量細胞死亡，高等哺乳類動物指間蹼的消失、顎融合、視網膜發育以及免yi系統的正常發育都必須有細胞死亡的參與。這些形形**的在機體發育過程中出現的細胞死亡有一個共同特征：即散在的、逐個地從正常組織中死亡和消失，機體無炎癥反應，而且對整個機體的發育是有利和必須的。因此認為動物發育過程中存在的細胞程序性死亡是一個發育學概念，而細胞凋亡則是一個形態學的概念，描述一件有著一整套形態學特征的與壞死完全不同的細胞死亡形式。但是一般認為凋亡和程序性死亡兩個概念可以交互使用。心外的部分細胞通過上皮間充質轉化進入心外膜下層,形成心肌細胞、血管內皮細胞、成纖維細胞和平滑肌細胞。貴州Balbc裸鼠原代細胞分離培養原理

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1、取新鮮抗凝全血（EDTA、枸櫞酸鈉或肝素抗凝血均可）或者去纖維蛋白血液，用等體積的全血及組織稀釋液或者PBS稀釋全血。2、取一支無菌離心管，先加入試劑A，再加入試劑D，使兩者形成梯度界面（試劑A：試劑D的體積比為3：2，如稀釋后的血液樣本小于5ml，則先后加入3ml試劑A和2ml試劑D；如稀釋后的血液樣本大于5ml，試劑總量與稀釋后的血液樣本量相等），兩種試劑的分層一定要清晰。3、將稀釋后的血液平鋪到分離液液面上方，注意保持兩液面界面清晰。（可以使用巴氏德吸管吸取血液，然后將血液小心的平鋪于分離液上，因為兩者的密度差異，將形成明顯的分層界面。如果樣品較多，加樣的時間較長，在離心之前出現紅細胞成團下沉屬正常現象）4、室溫，水平轉子500~800g，離心20~30min（血液的體積越大所需的離心力越大，離心時間越長，的分離條件需自行摸索，離心轉速不超過1000g）。5、離心后將出現明顯的分層：層為血漿層；第二層為白色單核細胞層；第三層為透明試劑D液層；第四層為半透明試劑A液層；第五層為紅細胞層（如圖示）。6、小心吸取第二層白色單核細胞層到另一無菌的15ml離心管中，加入10mL細胞洗滌液或PBS，顛倒混勻，250g，離心10min。7、棄上清。

血管生長是發生的關鍵步驟。無論原發性還是繼發性，一旦生長直徑超過1~2mm，都會有血管生成，這是由于細胞自身可分泌多種生長因子，誘導血管生成。由于組織這種新生血管結構及功能異常，且血管基質不完善，這種微血管容易發生滲漏，因此細胞不需經過復雜的侵襲過程而直接穿透到血管內進入血流并在遠隔部位形成轉移。越來越多的研究表明，良性血管生成稀少，血管生長緩慢；而大多數惡性的血管生成密集且生長迅速，因此，血管生成在的發展轉移過程中起到重要作用，抑制這一過程將能明顯阻止組織的發展和擴散轉移。血管生成實驗的技術原理主要是應用Matrigel模擬機體環境，上面接種細胞，觀察血管生成情況。體外的血管生成實驗能很好的模擬的血管發生過程，并且適合研究藥物對這一過程的影響實驗。我們以HUVEC細胞為例，介紹這一實驗的詳細過程。1、主要步驟Step1：細胞培養Step2：細胞轉染或藥物處理Step3：鋪Matrigel膠Step4：接種細胞Step5：觀察血管生成情況實驗過程中需要注意：1、實驗前一天需要將Matrigel置于冰盒，放入冰箱中，同時需要準備一些預冷的頭用于吸取Matrigel膠；2、將Matrigel膠加到血管生成載玻片時注意頭要垂直于內孔的正上方加入Matrigel。肝實質細胞體外常常被用作研究肝臟功能、能量代謝和肝臟疾病的良好模型。

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