在利用外泌體運輸PTX進行抗中流的研究中，由于間充質干細胞可以歸巢(homing)至中流細胞微環境并且可以不通過基因操作即可對PTX運輸，因此Pessina等采用間充質干細胞SR4987作為分泌外泌體的母代細胞，而后將SR4987與PTX共混，使SR4987分泌的外泌體含有PTX，再利用超速離心法將載有PTX的外泌體分離出來，研究其對體外人胰腺ai細胞株的影響。結果表明外泌體可以有效的運載PTX并不破壞其功能，小泡(主要指外泌體)溶液的蛋白質濃度在0.047～0.095mg/mL之間時可以誘導中流細胞凋亡50%，這種抑制效果與純PTX對體外ai細胞的抑制效果相當。癥狀細胞來源的外泌體含有與癥狀進展相關的分子。外泌體細胞共培養

目前為止已鑒別了2500余種miRNAs分子。例如，血液外泌體miR-21的升高已被證實與胰腺ai、結直腸ai、肝ai、乳腺ai、卵巢ai及食管ai等多種中流相關，可能與其參與中流xue管生成有關，研究表明肺ai細胞釋放的外泌體miR-21會通過STAT3依賴機制誘導周圍支氣管細胞血管內皮生長因子（vascularendothelialgrowthfactor，VEGF）的產生，從而促進血管生成。在食管ai中，miR-21還可以反映中流的惡性程度，食管ai患者的miR-21水平與良性中流患者相比急劇上升，上升的miR-21水平也與中流的淋巴侵襲和轉移相關。在膀胱ai患者中，尿液中的miR-21和miR-4454會明顯上調。外泌體circRNA測序干細胞外泌體可用于中風的治理，改善神經預后，增加血管與神經生成。

外泌體即細胞分泌的直徑約40-100nm的微小膜泡，多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。一開始被當做細胞排泄物，但是近幾年，研究發現外泌體可謂是小身體大作用。種瘤發生轉移后，如何靶向呈遞藥物一直是種瘤醫治中的一個巨大挑戰。發表于NanoLett的一項研究中，研究人員利用外泌體制備藥物的遞送系統（LD-MDS），并取得成功。在這項研究中，研究人員將相關藥物錨定在活巨噬細胞膜上，細胞自身相關蛋白酶響應開啟并將藥物轉載進入外泌體，順利遞送至肺轉移灶并且轉化為納米囊泡和次級納米囊泡，促進轉移性4T1病細胞的有效內化和細胞死亡。之后，受損的4T1病細胞可以釋放次級納米囊泡和游離藥物分子，再破壞鄰近的病細胞。研究顯示，LD-MDS對體內直徑小于100μm的肺轉移病灶顯示出優異的靶向效率，并顯著壓制肺轉移。

外泌體作為細胞外囊泡的一個亞群,直徑集中于30~150nm。目前,基于粒徑大小分離外泌體的方法有超濾法、尺寸排除色譜法、靜水過濾透析法和非對稱場流分離法等。超濾法利用不同孔徑的濾膜,對樣品進行選擇性分離以獲得外泌體,一般分為壓力超濾和離心超濾。其中離心超濾效果更好,不jin能減輕力對外泌體的破壞,而且可通過增大離心力和延長離心時間提高外泌體產物濃度。但離心力過大或離心時間過長均有可能導致超濾膜或外泌體破裂。此外,超濾法可以和切向流過濾法、微控流法、超速離心法或凝膠過濾色譜法等方法結合進一步提高分離效率。神經細胞來源的外泌體含有與神經退行性疾病相關的分子。

建立記錄各論文實驗條件的數據庫也可作為規避混亂的方法之一。一方面，隨著EV研究倍受世界矚目，各國啟動了大型研究項目。美國啟動NIH戰略性大型項目（ExtracellularRNACommunication），國際厲害性學會——Gordon和KeystoneSymposia也從2016開始成立會議小組。受到歐洲藥物研究開發公司“創新藥物倡議組織（IMI）”的支持推進的CANCER-ID項目，也包含EV研究在內。2017年日本選定了EV研究為文部科學省研究開發戰略的目標之一，期待會加速今后的研究發展。無論如何，今后EV研究的根本就是必須有強有力的研究方法和技術，而PS親和法有望成為其中之一。外泌體的功能取決于其所來源的細胞類型。植物外泌體lncRNA芯片

外泌體可參與到機體免疫應答、抗原提呈、細胞遷移、細胞分化等方方面面。外泌體細胞共培養

外泌體在各種疾病的診斷和治理中的應用研究火熱。外泌體的復雜性，為疾病檢測和監測提供了一個多指標的診斷窗口。此外，能夠向病變細胞輸送功能性物質的特性使外泌體有潛力作為基因和藥物遞送的載體。有研究總結了從外泌體中篩選的生物標志物，可用于疾病的診斷、預后及治理。外泌體在生物液體中寬泛分布，包括血液、尿液、唾液、胸腹水、腦脊液、膽汁、乳汁以及淚液等，其復雜的內容物被認為是疾病診斷的無創或微創生物標志物，具有檢測包括病癥在內的許多病理狀況的潛力，可以用于對心血管疾病和病癥等多種疾病的診斷和監測。外泌體細胞共培養