近年來，外泌體的捕獲技術越來越多，微流體系也被用于外泌體提取，此方法能根據其物理和生化特性同時分離外泌體。采用這種方法獲得的樣品純度高，且可及時獲取外泌體用于疾病的相關檢測。在初次注射時外泌體粘附在微流控設備的內表面，并在隨后的PBS注射中沖洗掉。此方法采用的設備復雜，所需的樣本量取決于流動通道的長度。另外，樣品量的注入速率比較低，因此，對于大樣品量，將需要較長的處理時間。外泌體在包括瘤子在內的各種疾病的發病機理中具有重要的功能。目前，研究人員已開發了多種方法來分離外泌體，離心技術仍然是常用方法，其他方法，例如過濾、磁珠分離和色譜法等，也顯示出獨特的優勢，但目前仍然沒有一種公認有效的提取方法，研究人員應針對不同來源的樣本以及不同的下游分析選取較適宜的提取方案。基于外泌體的液體活檢在病癥和其他疾病的診斷和確定預后方面具有潛在的應用價值。體液提取試劑盒生產廠家

外泌體分離的主要挑戰之一是消除納米級污染物，包括干擾外泌體標志物解析的游離核酸和脂蛋白。超速離心是目前分離外泌體的主要技術。盡管如此，它仍難以符合臨床應用所需的標準，主要是由于該方法得到的外泌體純度不足，產量較低，完整性欠佳且分離純化操作耗時長。其他方法，例如基于聚乙二醇（PEG）的沉淀，磷脂酰絲氨酸親和捕獲，尺寸排阻色譜法和膜親和捕獲，近年來已經出現在特定的應用中，但是只適用于特定場景。近來，非對稱流場-流分離方法已被用于從細胞和瘤子培養基中高分辨率地分選EV亞群，但其通量受到繁瑣的樣品制備程序的影響。單一分析耗時的過程也限制了其普遍的應用。因此，目前亟需開發創新技術以提高外泌體分離純化的效率，純度，產量，速度和耐用性。基于超濾的技術提供了潛在的有前途的替代方法，但它們也有缺點。在切向流過濾中，使進料流平行于多孔膜流動，以避免堵塞。然而，盡管已實現使用切向流過濾從大量條件細胞培養基中濃縮外泌體，但受制于其一次性模塊的成本高，高剪切應力，難以處理小體積樣品等因素而難以應用于臨床分析。體液外泌體提取試劑盒原理不同肝臟疾病中，細胞分泌的外泌體所攜帶的核酸和蛋白組分之間存在差異。

外泌體的來源與特征：外泌體是一種存在于細胞外的多囊泡體，通過細胞內吞泡膜向內凹陷形成，其大小均一，直徑為40-100nm，密度為1.10-1.18g/mL。外泌體可由間充質干細胞、淋巴細胞和腫細胞細胞等多種類型細胞主動分泌釋放。外泌體內主要含有核酸、蛋白質和脂質等，可作為疾病診斷標記物、調控靶細胞功能、參與細胞生物學活動等。例如：含有miR-140-5p的滑膜間充質干細胞來源外泌體(SMSC-Exo影響軟骨組織再生；骨髓間充質干細胞來源外泌體攜帶的miR-196a可調節成骨細胞分化促進大鼠顱骨缺損的骨再生。外泌體作為核酸的藥物遞送載體。

尺寸排阻色譜法（SEC）根據大小來分離樣本。該技術應用了一個裝有多孔聚合物珠的色譜柱，該聚合物珠包含多個孔和通道，分子根據其直徑穿過。半徑小的分子穿過柱子的孔遷移需要較長的時間，而大分子則較早地從柱子上洗脫下來。SEC可精確分離大分子和小分子。與離心分離方法相比，SEC分離的外泌體不受剪切力的影響，剪切力可能會改變囊泡的結構。此方法分離到的外泌體純度較高，在電鏡下大小均一，但是獲取量少，所需設備特殊。此外，SEC方法與超濾相結合已被用于尿液來源的外泌體的分離和分析。外泌體分析會引起何種生理作用，這是進一步研究的發展方向。

流式細胞技術針對外泌體的表面抗原標記物進行檢測，能夠實現外泌體的高通量、多通道分析。但是由于外泌體的粒徑小、折射率低，所以采用常規的流式細胞儀進行檢測時往往需要將外泌體與beads連接以增大表面積、增強反射，操作耗時又費力。Tian等搭建了一種高靈敏度的流式細胞儀(HSFCM)，將可檢測的外泌體粒徑降至40nm，能夠在不連接beads的情況下實現每分鐘10000個外泌體的檢測，并且能夠結合免疫熒光的方法進行外泌體標志蛋白質的定量檢測，目前該儀器已商品化。外泌體膜中有跨膜蛋白PGRL、LAMP1、LAMP2。廣州外泌體熒光標記

外泌體的膜同細胞一樣，是磷脂雙分子層。體液提取試劑盒生產廠家

在當代準確醫療的大趨勢下，外泌體的發現和研究為肺病的早期診斷和醫治提供了嶄新的方向。外泌體在液體活檢中的巨大潛力可以為肺病患者的早期發現和早期診療提供可靠依據。根據種瘤來源的外泌體在肺病的發發展和侵襲轉移過程中的作用及相關機制的研究，臨床醫療人員可以針對不同的患者制定合適的醫治方案，以達到改善肺病患者生存率，延長肺病患者生存時間的目的。但是，針對外泌體的研究還存在諸多的問題有待廣大研究者解決，如：外泌體的純化及標記方法、如何尋找外泌體的靶基因、外泌體的作用機制及信號通路等。總而言之，外泌體的研究有著廣闊的前景，基于外泌體與肺病的研究，有望研發出能夠應用于肺病臨床診斷和醫治的有效措施，造福更多的患者。體液提取試劑盒生產廠家

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