常規生物學實驗中，實時定量PCR技術（RT-PCR）普遍用于microRNA的檢測實踐中，但外泌體樣品中的microRNA豐度極低，普通RT-PCR技術的靈敏度已經不能夠滿足。第三代微滴式數字PCR——ddPCR技術，成為外泌體microRNA檢測的選擇技術。微滴式數字PCR（DropletdigitalPCR），又成為“油包水PCR”，在傳統的PCR擴增前對樣品進行微滴化處理，即將含有核酸分子的反應體系分成成千上萬個納升級的微滴，其中每個微滴或不含待檢核酸靶分子，或者含有一個至數個待檢核酸靶分子。經PCR擴增后，逐個對每個微滴進行檢測，有熒光信號的微滴判讀為1，沒有熒光信號的微滴判讀為0，根據泊松分布原理及陽性微滴的個數與比例即可得出靶分子的起始拷貝數或濃度。外泌體產生于細胞中的多泡體。黑龍江CD9外泌體慢病毒包裝

質膜的連續內陷較終導致多泡體的形成，多泡體可與細胞內的其他囊泡和細胞器交叉，從而增加了外泌體成分的多樣性。根據細胞來源的不同，細胞外囊泡，包括外泌體，可以包含細胞的許多成分，包括DNA、RNA、脂質、代謝物、胞質和細胞表面蛋白。目前產生外泌體的生理目的尚不清楚，需要進一步研究。一個推測的作用是外泌體可能從細胞中去除多余和/或不必要的成分以維持細胞內環境的穩定。近來的研究也表明外泌體中特定細胞成分的功能、靶向、機制驅動的積累，提示它們在調節細胞間通訊中發揮作用。細胞提取試劑盒原理隨著外泌體研究的不斷深入，它的應用已經涉及瘤子診療領域、醫學基礎和免疫領域、寄生蟲領域。

ELISA與WB的原理一樣，在抗體包被的微孔板中加入待測樣品、封閉、一抗孵育，洗滌后加入酶標待測物形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，徹底洗滌后加顯色劑并用酶標儀測定吸光值，結尾用標準曲線計算外泌體表達量。ELISA能實現對外泌體特異性蛋白的定量。其他外泌體鑒定方法還有微流體測定法和外泌體蛋白質組學分析等。由于外泌體在各種生命過程中的重要作用及其作為疾病生物標志物和藥物輸送系統的潛力，人們對此領域的興趣越來越高。盡管目前在技術上取得了長足的進步，但尚未建立對外泌體進行準確和標準化鑒定以及定量的方法，關于外泌體的量應由囊泡顆粒的數量、囊泡蛋白的量或囊泡數與蛋白之比來定義仍存在比較多爭論。建立外泌體分離、表征以及效價測定的標準化方法將是外泌體作為診斷和診療用途之前需要解決的問題。

外泌體的提取分離方法：1、超速離心法（差速離心）：超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2、密度梯度離心：在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而活躍細胞內的信號通路。

外泌體為細胞療法中的不同合成分子和生物分子的遞送提供了廣闊的前景和嶄新的診療領域。外泌體還顯示出了在診療各種疾?。ㄈ缧募〔『蜕窠洸。┓矫娴臐摿?。但是，在實際應用外泌體之前，需要使用大型動物模型進行進一步研究和臨床試驗。同時需要開發大規模生產質量可控的外泌體并快速純化外泌體的技術和策略。另外，在研究和評估外泌體的副作用和功效時，必須考慮到肉瘤細胞來源的外泌體可能增強肉瘤生長的潛在風險。外泌體給藥途徑：給藥途徑是獲得所需功效的重要參數。外泌體可以通過多種方法給藥，但是，靜脈內給藥是較常用的途徑。通過利用增強通透性和保留（EPR）效應，在荷瘤動物中靜脈內遞送外來體似乎是有用的。在某些容易達到肉瘤部位的不同惡性肉瘤中，外泌體療法的給藥途徑是瘤內注射。在疾病部位直接注射外泌體的優點是可以特異性地運送裝載的藥物。另外口服給藥，腹腔給藥，皮內給藥和鼻內給藥途徑已成功用于外泌體遞送。外泌體作為核酸的藥物遞送載體。血漿外泌體miRNA芯片

外泌體研究使用血漿樣本進行實驗較好。黑龍江CD9外泌體慢病毒包裝

密度梯度離心法根據在蔗糖、碘海醇或碘克沙醇等惰性溶液中的浮力密度將外泌體分成特定的層，目前普遍應用的是蔗糖，這種方法可以成功地將亞細胞成分（例如過氧化物酶體，線粒體和核內體）分離到密度梯度溶液中的不同層中。樣品被放置在梯度的頂部，當施加離心力時，樣品中的顆粒以獨特的速率通過梯度，該梯度以從上到下的密度增加。樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集，隨后可以通過分餾收集，密度梯度超速離心對從蛋白質聚集體和非膜顆粒中分離出外泌體非常有效。此方法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣、費時且會造成外泌體損失。黑龍江CD9外泌體慢病毒包裝

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